superficie
Resumen Antecedentes
selladores de superficie se han utilizado con éxito en la prevención del desgaste dental erosivo. Sin embargo, cuando múltiples superficies de los dientes deben estar herméticamente sellados, el procedimiento de fotopolimerización es mucho tiempo. Por lo tanto, el objetivo de este estudio fue investigar si la reducción del tiempo de curado por luz (mientras se mantiene la densidad de energía similar) tiene una influencia sobre la citotoxicidad impermeabilización de superficies a base de resina
Métodos
discos de dentina de bovino fueron tratados de la siguiente manera:. Grupo 1: no se trata, los grupos 2-5: Seal & amp; proteger y grupos 6-9: sellador experimental. Los grupos 2 y 6 eran fotocurado (dispositivo fotopolimerizable VALO LED) durante 40 s (1.000 mW /cm
2), grupos de 3 y 7 de 10 s (1.000 mW /cm 2), grupos de 4 y el 8 de 7 s (1.400 mW /cm 2) y los grupos 5 y 9 durante 3 s (3200 mW /cm 2). Más tarde, se extrajeron los materiales en medio de cultivo durante 24 h, y se liberan deshidrogenasa actividad de lactato (LDH) como medida de la citotoxicidad se determinó fotométricamente después de las células (células de la pulpa dental y los fibroblastos gingivales) fueron expuestas a los extractos durante 24 h. Tres experimentos independientes, tanto para la preparación de muestras y pruebas de citotoxicidad, se llevaron a cabo.
Resultados
En general, se observó más baja citotoxicidad para el grupo control sin sellar. No se observó ninguna influencia significativa de la configuración de curado por luz en la citotoxicidad (p = 0,537 y 0,838 para células de la pulpa y de los fibroblastos gingivales, respectivamente). No se observó ninguna diferencia significativa en la citotoxicidad de los dos sellantes después de la fotopolimerización con la misma configuración fotopolimerizables (grupo 2 vs. 6, 3 vs. 7, 4 vs. 8 y 5 vs. 9: p & gt; 0,05, respectivamente ). Conclusiones
Acortar el tiempo de curado por luz, mientras que el mantenimiento de la densidad de energía constante, dieron como resultado que no supere la citotoxicidad de los selladores investigados.
Palabras clave
tiempo sellador de superficie de la dentina luz para la exposición de la resina citotoxicidad Florian J Wegehaupt , Tobias T Tauböck, Thomas Attin y Georgios N Belibasakis contribuyeron igualmente a este trabajo
material complementario Electrónico
La versión en línea de este artículo. (doi:. 10 1186 /1472-6831-14-48) contiene material suplementario, que está disponible para los usuarios autorizados.
Antecedentes
pérdida dental duro erosiva de tejido o de reblandecimiento se puede prevenir mediante la aplicación tópica de diversos compuestos químicos (por ejemplo, de fluoruro de amina [1] y el fluoruro de sodio [2]). Este reblandecimiento o pérdida de los tejidos dentales duros también podrían prevenirse por dificultando el contacto de la erosión que causa ácidos con los tejidos dentales duros por medio de una barrera mecánica. Brunton et al. [3] sugerido una capa de dentina expuesta erosiva con un adhesivo a base de resina de la dentina para evitar un mayor desgaste. Estudios recientes han demostrado un buen efecto de protección de un recubrimiento tal contra erosiva y erosiva /desgaste abrasivo bajo tanto en-vivo
e in vitro condiciones
[4-7].
Sin embargo, el sellador (Seal & amp ; Proteger, Dentsply de Trey, Konstanz, Alemania) utilizado en estos estudios tiene que ser luz-curado durante al menos dos veces durante 10 s por la superficie del diente, cuando se utiliza la configuración del dispositivo de polimerización en común intensidad (aproximadamente 1000 mW /cm2 de salida ). Cuando múltiples superficies de los dientes tienen que ser sellado, el procedimiento de fotopolimerización se convierte en mucho tiempo. En un estudio reciente, los selladores de superficie han sido fotocurado con una duración más corta, mientras que la intensidad de la luz se incrementó al mismo tiempo [8]. En ese estudio, no se observó diferencia significativa en el efecto protector contra la desmineralización erosiva y en la estabilidad mecánica, cuando los selladores de superficie fueron rápido luz-curado.
Para otros materiales dentales a base de resina (adhesivos, materiales compuestos y de cementación cementos) una duración más corta de la fotopolimerización por lo general resulta en un menor grado de conversión [9-11], propiedades mecánicas inferiores [12] y una mayor citotoxicidad [13, 14]. Con el desarrollo de una mayor intensidad de luz de curado unidades, se podría considerar la compensación de grados más bajos de la conversión debido a la duración más corta de luz de curado mediante el aumento de la intensidad de curado por luz. Sin embargo, hay estudios [15, 16] que muestran que un aumento masivo de la intensidad fotopolimerizable puede tener un efecto adverso sobre el grado de conversión, con una mayor intensidad de la luz que resulta en un menor grado de conversión. Junto a las propiedades mecánicas más pobres [12, 17], un menor grado de conversión (mayor cantidad de monómeros no polimerizados restante) también se asocia con una mayor citotoxicidad de los materiales a base de resina [18-20].
A la presente, ningún estudio se ha publicado que examina el uso de una mayor intensidad de la luz para compensar los efectos secundarios negativos (aumento de citotoxicidad) de una duración fotopolimerizable abreviada de selladores de superficie. Si este acortamiento es posible sin efectos negativos (esto significa un aumento de citotoxicidad), esto podría reducir el tiempo que se consume en el procedimiento, cuando se aplica el sellado en la dentición total o numerosos dientes.
Por lo tanto, el objetivo del presente estudio fue investigar si la reducción de la duración de la fotopolimerización (mientras se mantiene la densidad de energía similar, aumentando al mismo tiempo la intensidad de la luz de curado) tendría una influencia sobre la citotoxicidad de dos selladores de superficie ensayada. México la hipótesis del presente estudio fue que (1) el acortamiento la luz del tiempo de curado al mismo tiempo aumentar los resultados de intensidad de la luz en una citotoxicidad mayor de los selladores de superficie y (2) que el tipo de sellador tiene una influencia en la citotoxicidad.
Métodos preparación de la muestra
Para este estudio, 126 discos de dentina bovina se prepararon a partir de las especies bovina raíces incisivos inferiores. Los dientes de bovino se recogieron como anónimo subproductos del sacrificio regular de los bovinos. Sacrificio de ganado se realizó para proporcionar el ganado como alimento para el consumo humano. Por lo tanto, no era necesaria la aprobación ética. Las muestras se extrajeron con una fresa hueca (diámetro interior del taladro: 5 mm) de la superficie distal y mesial de cada raíz. Los núcleos de perforación se molieron hasta un espesor de 1 mm con papel de lija (800, 1000, 1200, 2400, y 4000 de grano; prueba de agua de carburo de silicio de papel, Streuers, Erkrat, Alemania). Después de la molienda, las muestras se comprobaron con un estereomicroscopio a 40 × magnificación para asegurar la eliminación completa del cemento. Después de la preparación, los discos de dentina eran gamma esterilizado (12 kGy, 4 h, Paul Scherrer Institut, Villigen, Suiza), mientras que se almacena en el agua y más adelante se almacena en el agua del grifo hasta que se utilizaron en el estudio. Los 126 discos de dentina fueron asignados aleatoriamente a nueve grupos (1 - 9, n = 14).
Sellado procedimiento
los selladores de superficie, su composición, sus números de lote y los fabricantes se dan en la Tabla 1 Composición 1.Table de los selladores utilizados superficie (información del fabricante)
Producto
Composición
Seal & amp; Proteger (Dentsply de Trey, Konstanz, Alemania) Lote: 1203000305
Di - y resinas de trimetilolpropano, PENTA (dipentaeritritol penta acrilato monofosfato), sílice amorfa funcionalizada, fotoiniciadores, hidroxitolueno butilado, hidrofluoruro cetilamina, triclosan, acetona
K-0184 (Dentsply De Trey, Konstanz, Alemania) Lote: LAN-18-153-1 resinas
di- y trimetacrilato; PENTA (dipentaeritritol penta acrilato monofosfato), sílice amorfa funcionalizada, fotoiniciadores, hidroxitolueno butilado, hidrofluoruro cetilamina, acetona
Los discos de dentina del grupo 1 se dejaron sin tratar y sirvieron como control sin tratar. Los discos de dentina de los grupos 2 - 5 fueron tratados con Seal & amp; Proteger (Dentsply De Trey, Konstanz, Alemania), mientras que los discos de dentina en grupos de 6 - 9 fueron tratados con K-0184 (sellador experimental; Dentsply De Trey). Los selladores respectivas (una gota por aplicación) se aplicaron sobre la superficie del disco de dentina y se dejará reposar durante 20 s. Después de 20 s, el disolvente restante se eliminó con una jeringa de aire, y el sellador fue fotocurado. Se aplicó una segunda capa de sellador, el disolvente se evaporó con una jeringa de aire y de la luz-curada de nuevo. Fotopolimerizable se realizó con el VALO dispositivo de curado por luz LED (Ultradent Products, South Jordan, USA). En los grupos 2 y 6 fotopolimerizable se llevó a cabo en el modo estándar (1000 mW /cm 2) durante 40 s (= 40 J /cm 2), en los grupos 3 y 7 en el modo estándar (1000 mW /cm 2) durante 10 s (= 10 J /cm 2), en grupos de 4 y 8 en el modo de alta potencia (1400 mW /cm 2) durante 7 s (= 9,8 J /cm < sup> 2) y en los grupos 5 y 9 en el modo de emulación de plasma (3200 mW /cm 2) durante 3 s (= 9,6 J /cm 2). La unidad de fotopolimerización se comprobó la consistencia antes de curar usando un radiómetro (Optilux Radiometer, SDS Kerr, Orange, CA, EE.UU.). La celebración de las muestras con una pinza y dejar reposar la ventana de salida de luz sobre el fórceps garantizada una distancia constante entre la punta fotopolimerizable y muestras de superficie de 0,5 cm [8]. Después de la polimerización final, la capa (superficie blanda) inhibida por el oxígeno se eliminó con una bolita de algodón.
Preparación de extractos
Las 14 muestras por grupo se transfirieron a un pocillo (22,1 mm de diámetro) de una célula 12 también placa de cultivo (SPL Life Sciences Inc., Gyeonggi-do, Corea del Sur). Durante la transferencia de los discos de dentina en los pozos, se tuvo cuidado de que los discos se colocaron con el lado sellado en el pozo. Los discos de dentina se cubrieron con medio de cultivo 3 ml de células, que consta de medio DMEM /F12, complementado con 1% de penicilina /estreptomicina, 1% de L-glutamina, 50 ng /ml de fungizona y suero bovino fetal inactivado por calor al 10% (todos de Sigma-Aldrich, Buchs, Suiza). Se incubaron después en la oscuridad durante 24 horas a 37 ° C y 5% de CO 2 [21]. Por lo tanto, los extractos de los discos de dentina se prepararon en una proporción de 91,6 mm 2 superficie de la muestra por medio de cultivo celular mililitro siguiendo las recomendaciones de la ISO [21]. Los cultivos de células
células de la pulpa dental de los dientes permanentes Humanos y fibroblastos gingivales se obtuvieron de acuerdo con los procedimientos descritos anteriormente y los requisitos éticos [22, 23]. Los fibroblastos gingivales fueron proporcionados por el Dr. Anders Johansson, Instituto de Odontología de la Universidad de Umea, Suecia (Comité Ético estudios en humanos de la Universidad de Umea, Suecia - §68 /03, DNR 03-029). La colección de células de la pulpa dental se atiene a las directrices del Comité Ético del Cantón de Zúrich, Suiza, para la recogida de material con fines de investigación obtenidos a partir de muestras descartadas e irreversiblemente anónimos de origen humano. Para los experimentos en el presente estudio, las células se cultivaron en medio DMEM /F12, complementado con 1% de penicilina /estreptomicina, 1% de L-glutamina, 50 ng /ml de fungizona y suero fetal inactivado por calor al 10% bovina (todos de Sigma -Aldrich, Buchs, Suiza). Para los experimentos, se utilizaron cultivos de células entre el tercer y quinto pasajes. las células de la pulpa dental se sembraron a una densidad de 2 × 10 5 células por pocillo, mientras que los fibroblastos gingivales se sembraron a una densidad de 1,2 × 10 5 células por pocillo (cuatro cultivos replicados por grupo dilución extracto) de una placa de 96 pocillos, y se incubaron durante 24 horas a 37 ° C para permitir la fijación de las células en el fondo del pozo, alcanzando 100% de confluencia. A partir de entonces, se añadieron 200 l por pocillo de los extractos a los cultivos celulares, y se dejó incubar durante 24 h, con el fin de investigar la citotoxicidad. Ensayo de citotoxicidad
Los potenciales efectos citotóxicos de diferentes grupos de tratamiento sobre las células de la pulpa dental y cultivos de fibroblastos gingivales se evaluaron por medición de la lactato deshidrogenasa citosólica extracelularmente liberado (LDH), utilizando el CytoTox96 ® no radiactivos Ensayo de citotoxicidad (Promega Dübendorf, Suiza). Después de la exposición de 24 h de los cultivos celulares a los extractos de materiales, se recogieron los sobrenadantes de cultivo de células, mientras que las células adherentes se lisaron mediante tres ciclos repetidos de congelación-descongelación, en 200 l de medio de cultivo celular. Tanto los sobrenadantes de las células y lisados se centrifugaron a 1000 rpm durante 5 min para eliminar los residuos de células, y, posteriormente, se diluyeron 1:10 y se transfirieron a una placa de 96 pocillos ópticamente transparente, seguido de la adición de la solución de reacción y se incubaron durante 30 min en el oscuro. La reacción se detuvo a continuación y la absorbancia se midió a 490 nm en un lector de microplacas Epoch (Biotek, Lucerna, Suiza), restando los valores de fondo correspondientes de todas las muestras. Los resultados de citotoxicidad se expresan como porcentaje de la actividad LDH extracelular liberado, calculada contra la actividad total de LDH (+ intracelular extracelular). Este porcentaje corresponde a la cantidad relativa de células muertas entre el total de células en cultivo. Se realizaron tres experimentos independientes (incluyendo tanto la preparación de muestras y pruebas de citotoxicidad). El análisis estadístico
Para cada uno de los tres experimentos independientes, el porcentaje medio de LDH liberada de las cuatro réplicas biológicas por grupo fue calculado y utilizado más adelante como valores para el grupo respectivo en respectivo experimento. Para el análisis estadístico del porcentaje medio de los respectivos valores (media de las cuatro réplicas biológicas por experimento) de los tres experimentos se calculó.
El análisis estadístico se realizó mediante el programa de software de IBM ® SPSS ® Estadísticas versión 22 (Internetional Business Machines Corp., Armonk, Nueva York, Estados Unidos). Francia El supuesto de distribución normal de los errores se comprobó, mediante el test de Shapiro-Wilk. El análisis estadístico se realizó mediante
ANOVA de 2 vías con los factores de ajuste fotopolimerizable y el sellador por separado para las células de la pulpa dental y los fibroblastos gingivales seguido del test post-hoc de Bonferroni /Dunn. El nivel de significación se fijó en p & lt; 0.05.
: Resultados de la actividad de la LDH libera extracelularmente a partir de células de la pulpa dental Francia El porcentaje de LDH extracelular liberado de células de la pulpa de los diferentes grupos tratados con diferentes selladores y diferentes ajustes fotopolimerizables se presentan en la figura 1. La figura 1 liberación de LDH de las células de la pulpa dental. leyenda detallada: Porcentaje (media ± DE) de la actividad de LDH extracelular liberado de las células de pulpa dental para diferentes selladores (S & amp; P = Seal & amp; proteger y sellador experimental K-0184) y diferentes ajustes fotopolimerizables (duración de la luz-curado en s /intensidad en mW /cm2 de luz de curado). Las comparaciones dentro de la misma sellador entre los distintos ajustes fotopolimerizables que no son significativamente diferentes, están marcados con las mismas letras (letras minúsculas y mayúsculas para S & amp; P y K-0184, respectivamente). Las comparaciones dentro del mismo marco privilegiado entre los diferentes selladores que no son significativamente diferentes, están marcadas con ns fotopolimerizable.
Ninguna influencia significativa de la luz-curado ajuste se observó (p = 0,537) en la citotoxicidad de los selladores de superficie. El tipo de sellador, sin embargo, tenía una influencia significativa en la citotoxicidad se podía observar (p = 0,018).
Se observó la citotoxicidad significativamente más bajo para el grupo control no tratado 1. Francia El 2-way ANOVA mostró una significativa influencia del tipo de sellador en la citotoxicidad. Dentro de los respectivos ajustes de luz de curado, K-0184 mostró una citotoxicidad mayor que Seal & amp; Proteger, sin embargo, estas diferencias no fueron estadísticamente significativas (grupo 2 frente a 6: p = 1,000; 3 vs 7: p = 1,000; 4 vs. 8: p = 1,000 y 5 vs. 9: p = 1,000): perfil actividad LDH extracelular liberado de fibroblastos gingivales comentario El porcentaje de LDH extracelularmente liberado de fibroblastos gingivales para los diferentes grupos tratados con diferentes sellantes y diferente iluminación. configuración de curado se presentan en la Figura 2. Figura 2 la liberación de LDH a partir de fibroblastos gingivales. leyenda detallada: Porcentaje (media ± DE) de la actividad de LDH extracelular liberado de fibroblastos gingivales para diferentes selladores (S & amp; P = Seal & amp; Proteger y sellador experimental K-0184) y diferentes ajustes fotopolimerizables (duración fotopolimerizable en s /luz -curing intensidad en mW /cm2). Las comparaciones dentro de la misma sellador entre los distintos ajustes fotopolimerizables que no son significativamente diferentes, están marcados con las mismas letras (letras minúsculas y mayúsculas para S & amp; P y K-0184, respectivamente). Las comparaciones dentro del mismo marco privilegiado entre los diferentes selladores que no son significativamente diferentes, están marcadas con ns fotopolimerizable.
Ninguna influencia significativa de la luz-curado ajuste se observó (p = 0,838) en la citotoxicidad de los selladores de superficie. Al comparar los tipos de sellador, se observó una influencia significativa sobre la citotoxicidad (p & lt; 0,001).
La citotoxicidad significativamente más baja se observó en el grupo de control no tratado 1.
Aunque 2-way ANOVA mostró una influencia significativa del tipo de sellador en la citotoxicidad, no hay diferencia significativa se observó entre los dos sellantes luz-curado con el establecimiento de la misma fotopolimerizable (grupo 2 vs. 6: p = 0,995; 3 vs. 7: p = 1,000; 4 vs. 8: p = 0,507 y 5 vs. 9: p = 1,000). Sin embargo, K-0184 mostró una mayor tendencia hacia la citotoxicidad que hizo Seal & amp;. Discusión Proteja dentro del mismo entorno fotopolimerizable
En el presente estudio, los extractos de las respectivas selladores se prepararon mediante la inmersión de los discos de dentina cubiertas de los distintos selladores en medio de cultivo celular. Otros estudios que investigan la citotoxicidad de los materiales dentales por ejemplo, adhesivos preparados los extractos por cualquiera de curar los materiales a ensayar en viales [24, 25], los pozos de [26], en portaobjetos de vidrio [27] o en moldes de [28]. Más tarde, el medio de cultivo celular se expuso a estos materiales curados o los materiales sin curar se les dio directamente a las células [29] o se disolvieron en medio de cultivo celular [30]. La desventaja de curar los materiales en viales o pozos (por ejemplo, bien de microplacas de 96 pocillos) es que la capa de inhibición de oxígeno, rico en monómeros sin curar y componentes adhesivos, en la parte superior de estos materiales no se puede quitar fácilmente. Como los monómeros sin curar y otros componentes se pueden diluir fácilmente de la capa de inhibición de oxígeno, esto se traduce en una mayor cantidad de estas sustancias en los extractos preparados a partir de muestras en las que no se elimina la capa de inhibición de oxígeno. También existen desventajas en la curación de los materiales en láminas de vidrio o en moldes. Estos materiales, así como los selladores de prueba aquí, se pretendía reaccionar con las sustancias duras dentales que se aplican sucesivamente. Durante esta reacción se podría suponer que hay un cambio en la composición química o reactividad de los materiales aplicados. Este cambio podría tener una influencia en la liberación posterior de posibles compuestos citotóxicos de los materiales. Por lo tanto, se supone que la aplicación de los selladores en los discos de dentina y la eliminación de la capa de inhibición de oxígeno, tal como se recomienda por el fabricante, antes de inmersión en medio de cultivo celular es ventajoso para la salud del tejido.
La dentina utilizado para la preparación de la Los discos de dentina de los dientes se ganó la especie bovina. Aunque la reacción con y el efecto sobre la dentina humana es el objetivo real de la investigación dental, existen numerosas ventajas del uso de la dentina bovina. Por un lado, es fácil de obtener un número suficiente de dientes bovinos de sonido [31] y debido a su mayor superficie, múltiples muestras se puede obtener de un diente que resulta en una diversidad de línea de base inferior de las muestras. Por otro lado, los dientes de la especie bovina no tienen un fluoruro y /o la caries historia que muchos dientes humanos tienen, lo que podría influir en su composición química y la interacción con los selladores de superficie aplicados.
Para probar el efecto citotóxico de los selladores de superficie, se utilizaron células de la pulpa dental y los fibroblastos gingivales. Suponemos que bajo condiciones clínicas estos tipos de células son los afectados principalmente por la citotoxicidad de los selladores de superficie. Además, las células de pulpa dental [21, 23, 32, 33] y fibroblastos gingivales [18, 22, 26, 34] se han utilizado en numerosos estudios que prueban la citotoxicidad de los materiales dentales a base de resina, o varios otros agentes biológicos. Medición de la actividad de LDH extracelular liberado es un ensayo de rutina muy adecuado para evaluar los efectos citotóxicos de diferentes agentes, incluidos los productos químicos o bacterias, en las células eucariotas [35, 36]. Sin embargo, hay que señalar que el ensayo puede medir la muerte por lisis de las células, en lugar de la muerte celular apoptótica mecánicamente más perplejo, lo que sería más allá del alcance del presente estudio.
Una limitación del presente estudio podría ser que durante aplicación de los selladores se simuló ninguna presión intra-pulpar. El flujo resultante dirigida hacia el exterior de la dentina licor podría disminuir el contacto de las células de la pulpa con los selladores aplicados en la dentina. Teniendo en cuenta estos resultados, se supone que los valores obtenidos para la citotoxicidad sobre las células de la pulpa dental podrían ser ligeramente sobreestimada. Sin embargo, si los selladores se han aplicado en una configuración de prueba barrera de la dentina como la utilizada en otros estudios probar la citotoxicidad de los sistemas adhesivos [37, 38] no podría haber sido una subestimación de la citotoxicidad de fibroblastos gingivales. Por lo tanto, se consideró una sobreestimación de la citotoxicidad en las células de la pulpa dental para ser más aceptable que una subestimación del efecto citotóxico sobre los fibroblastos gingivales.
La hipótesis principal de este estudio, que acorta el tiempo de curado por luz al mismo tiempo aumentar los resultados de intensidad de luz en una citotoxicidad mayor de los selladores de superficie, tiene que ser rechazado como se observó ninguna influencia significativa de los ajustes de luz de curado en la citotoxicidad, ni para las células de la pulpa dental ni para los fibroblastos gingivales. Este hallazgo contrasta con otros estudios que muestran que para otros materiales dentales a base de resina (compuestos a partir de cementación y cementos) una duración más corta fotopolimerizable que más probablemente se traduce en una mayor citotoxicidad [13, 14]. Suponemos que hay dos posibles explicaciones para estos resultados contrarios: por un lado, se acortó el tiempo de curado por luz, pero al mismo tiempo, se aumentó la intensidad de curado por luz, lo que resulta en una aplicación de densidades de energía similares, mientras que en la mencionada estudios sólo se acortó el tiempo de curado de luz. Se puede suponer que la aplicación de las densidades de energía similares resultados en la formación de cantidades similares de radicales, lo que resulta en un grado similar de conversión. Por otra parte, en aquellos estudios que mostraron una citotoxicidad más alta después de un menor tiempo de curado por luz, los materiales compuestos restauradores de resina [14] o cementos de resina [13] con un grosor de las muestras de 2 mm y 1 mm fueron probados, respectivamente. Por el contrario, el espesor de capa de los selladores analizados en el presente estudio ascendió comúnmente entre 22 micras [39] a 40 m [40]. Suponemos que debido a este espesor mucho menor de la capa de sellante, acortamiento de la duración de la luz de curado tiene una influencia menor sobre la citotoxicidad, como la luz de curado puede llegar fácilmente a la parte inferior de las muestras (capa de sellado). Cuando la lámpara de polimerización alcanza fácilmente incluso la parte inferior de las muestras más corta duración fotopolimerizable entregará la energía suficiente para estas zonas del material para asegurar un curado adecuado de los monómeros. Todos los grupos de selladores de superficie (independientemente de la configuración de la luz de curado utilizados) mostraron una citotoxicidad significativa. Sin embargo, en ninguno de los grupos fotopolimerizables "rápidos" (4, 5, 8 y 9) era una citotoxicidad significativamente más alto observado que para los grupos de fotocurado siguiendo las instrucciones del fabricante (grupos 3 y 7) o los grupos con extensas fotopolimerizable (grupos 2 y 6). A lo mejor de nuestro conocimiento, no se han reportado problemas con la biocompatibilidad de los selladores probados cuando la luz-curado, siguiendo las instrucciones de los fabricantes, por lo que se podría suponer que el organismo humano puede tolerar el aquí encontró citotoxicidad.
También el secundario hipótesis de que el tipo de sellador tiene una influencia en la citotoxicidad, tiene que ser rechazada. Aunque el ANOVA mostró una influencia significativa del tipo de sellador en la citotoxicidad tanto para las células de la pulpa dental y los fibroblastos gingivales, no hay diferencia significativa en la citotoxicidad de los selladores se pudo observar al comparar los valores de las dos selladores irradiados con protocolos de curado idénticas. Sin embargo, una más alta, pero no claramente diferente, la citotoxicidad se podía observar para K-0184 para ambos tipos de células. Este hallazgo podría ser atribuida a la composición del material. Básicamente, K-0184 tiene la misma formulación que Seal & amp; Proteger, pero no contiene triclosan. El triclosán se incorpora como aditivo antimicrobiano en numerosas cuidado personal y productos higiene como jabones, productos de limpieza, cosméticos, ropa deportiva, enjuague bucal y pasta de dientes [41]. Las preocupaciones sobre el uso de triclosán se han planteado como los estudios han demostrado que el triclosán es capaz de inducir resistencias a antibióticos en bacterias diferentes se deriva [42], que se acumulan en muestras de leche humana y en los peces expuestos a las aguas residuales municipales [43]. La forma más fácil para evitar estos efectos secundarios negativos de triclosan es evitar su incorporación en productos utilizados en sujetos humanos. Sin embargo, si el triclosán es excluido de la formulación química dada de Seal & amp; Protect, esto también cambiar la proporción de los otros componentes en la formulación. Se podría suponer, que este cambio podría dar lugar a un cambio o aumento de los componentes que no han reaccionado en el producto fotocurado, posteriormente, causando una citotoxicidad mayor.
Conclusión
Dentro de las limitaciones del presente estudio, se puede concluir que acortar el tiempo de exposición a la luz, mientras se mantiene la densidad de energía, como resultado no mayor citotoxicidad de los selladores de superficie curada de esta manera. Teniendo además en cuenta que la reducción de los tiempos de exposición de luz, mientras que el mantenimiento de la densidad de energía, no tiene ninguna influencia negativa sobre el potencial de prevención de la erosión y la estabilidad mecánica de los selladores de superficie [8] se puede concluir que el protocolo fotopolimerizable (luz 3 s -curing en 3200 mW /cm 2 (= 9,6 J /cm 2)) que se utiliza aquí proporciona un enfoque rápido y seguro de usar selladores de superficie para evitar el desgaste dental erosivo. Sin embargo, estudios posteriores respecto de la abrasión, el grado de conversión y la estabilidad a largo plazo de los selladores de superficie por lo curados son necesarios antes de hacer recomendaciones para el uso clínico se pueden dar.
Declaraciones
Reconocimiento
Los autores desean reconocer la señora Elpida Plattner para llevar a cabo las pruebas de citotoxicidad. El Dr. Anders Johansson se agradece proporcionar los fibroblastos gingivales.
Los autores originales presentados archivos de imágenes
A continuación se presentan los enlaces a los archivos de los autores presentados original para imágenes. 'archivo original para la figura 1 12903_2014_380_MOESM2_ESM.pdf autores 12903_2014_380_MOESM1_ESM.pdf Autores archivo original para la figura 2 Conflicto de intereses México La autores declaran que no tienen intereses en competencia.
contribuciones de los autores
FJW participó en el diseño del estudio del estudio, la preparación del material ensayado, el rendimiento de los cultivos celulares, análisis de datos y escribió el manuscrito. TTT ayudó en la redacción del manuscrito y le dio entrada especialmente crítica en relación con el tema de polimerización. TA participó en el diseño del estudio y revisó críticamente el artículo. GNB participó en el diseño del estudio, el rendimiento de los cultivos celulares y ensayos de LDH, análisis de datos y revisión crítica del manuscrito. Todos los autores leído y aprobado el manuscrito final.
