ortodoncia
Resumen Antecedentes
comentario El objetivo de este estudio fue determinar si la adición de partículas de nanoplata MICROSILVER o de una imprimación de ortodoncia afecta a la resistencia al corte de bonos (SBS) y el soporte del fracaso /adhesivo
Métodos
incisivos de bovino fueron divididos aleatoriamente en seis grupos con 16 muestras en cada uno:. en el grupo 1 (control), los soportes se unieron con el cebador Transbond ™ XT. En los grupos experimentales, MICROSILVER (grupos 2 y 3) y nanoplata (grupos 4-6) partículas de diferentes tamaños se añadieron a Transbond XT imprimación y fotocurado durante 15 segundos [Grupo 2: 0,1% (w /w) de tamaño de partícula microplata 3,5 a 18 micras; grupo 3: 0,3% (w /w) de tamaño de partícula microplata 3,5 a 18 micras; Grupo 4: 0,11% (w /w) de tamaño de partícula nanoplata 12,6-18,5 nm; grupo 5: 0,18% (w /w) de tamaño de partícula nanoplata 12,6-18,5 nm; Grupo 6: 0,33% (w /w) de tamaño de partícula nanoplata 12,6-18,5 nm]. A partir de entonces, los soportes se unen mediante fotocurado el adhesivo durante 20 segundos. Después de 24 horas de almacenamiento en agua destilada a 37 ° C, SBS se midió con una máquina de ensayo Zwicki 1120. El índice de adhesivo remanente y la prevalencia de manchas de plata sobre la superficie de la muestra se determinaron bajo aumento de 10x. . Se realizó un análisis estadístico de dos vías ANOVA para la comparación de SBS, y se utilizó una prueba de chi-cuadrado para comparar las puntuaciones de IRA y la prevalencia de manchas de plata
: Resultados de la No se observaron diferencias significativas en SBS (control: 16.59 ± 6.82 MPa; grupo 2: 20,6 ± 4,19 MPa; grupo 3: 16.98 ± 4.84 MPa; grupo 4: 17.15 ± 5.92 MPa; grupo 5: 20.09 ± 3.35 MPa; grupo 6: 16,44 ± 4,51 MPa; p Hotel & gt; 0,665) y no se encontraron puntuaciones de IRA (p = 0,901) entre el grupo control y cualquier grupo experimental. Sólo los grupos experimentales con partículas de nanoplata revelaron manchas estadísticamente más plata en el adhesivo restante.
Conclusiones
La adición de pequeñas concentraciones de partículas de nanoplata MICROSILVER o no afecta ni a las puntuaciones de la SBS, ni ARI. La adición de partículas de nanoplata resultados en manchas de plata en la cartilla que queda visible bajo aumento de 10x. Se necesitan más estudios para investigar los anti-caries potencial y rendimiento clínico de imprimación de ortodoncia convencional con partículas de nanoplata o MICROSILVER incorporadas.
Palabras clave
Resistencia adhesiva MicroSilver nanoplata antimicrobiana Antecedentes
desmineralización seguido de la formación de la mancha blanca es una complicación de la terapia de ortodoncia bien conocido cuando se utilizan aparatos fijos [1-5]. El riesgo de lesiones de mancha blanca es significativamente menor en ortodoncia lingual [6], pero todavía está presente [7]. Es causada por un mayor número de Streptococcus mutans
y otros microbios patológicos en la biopelícula, la disminución de pH y la higiene bucal comprometida [3]. Las medidas preventivas que intentan reducir la desmineralización deben ser independientes de cumplimiento por parte del paciente. Estas medidas incluyen agentes adhesivos antimicrobianos, enjuagues bucales llevar a los agentes antimicrobianos, revestimientos sobre soportes de cables /o agentes adyacentes a los aparatos de ortodoncia remineralizante [5,7].
Lim et al. [8] observaron que se detectaron más bacterias en el adhesivo que en el material de soporte en sí. Este hecho ha favorecido el desarrollo de adhesivos antibacterianos innovadoras diseñadas para reducir la colonización bacteriana. Los recientes desarrollos en los adhesivos han incluido la incorporación de vidrios bioactivos en la auto-mezclado de resina [9,10] o selladores [11] u otros aditivos especiales en el adhesivo [5,12-15]. Por desgracia, el efecto antimicrobiano de estas adiciones puede persistir durante sólo unas pocas semanas [12,16] y puede dar lugar a tasas de fracaso adhesivas superiores [14,16-18]. Otras investigaciones se han ocupado de óxido de titanio en las superficies de soporte [19] o la aplicación de nanopartículas tales como titanio, óxido de titanio, zinc, óxido de zinc, oro, plata o iones de plata [5,20-22]. Estos y otros métodos experimentales han sido recientemente revisado por Borzabadi-Farahani et al. [17].
Sin embargo, todos los nuevos enfoques de unión tienen que cumplir con el requisito de la fuerza de unión aceptable, que oscila entre 5,9 y 7,8 MPa [23]. Del hotel Silver mucho tiempo se ha conocido como un agente antimicrobiano [24] con efectos antimicrobianos superiores a las de oro o de zinc [25]. Las nanopartículas de plata son menores que 100 nm de tamaño e interactuar más estrechamente con los microbios. Ellos proporcionan un área superficial mayor para la actividad antimicrobiana debido a una mayor proporción de superficie a volumen, en comparación con partículas más grandes [19,26]. En la ortodoncia se aplican dos mecanismos para la reducción bacteriana: a) combinar los materiales dentales con nanopartículas; y b) el recubrimiento de superficies con nanopartículas para evitar la adhesión microbiana [17].
Desafortunadamente, el rendimiento clínico de materiales cargado con plata para potencialmente detención caries en odontología restauradora siempre ha estado limitado por la decoloración y estética reducidos [27,28]. el tratamiento de restauración de caries en los niños con Ketac-Plata, un cemento de ionómero de vidrio que contiene 45-55% de partículas de plata [29], se tradujo en un 8,4% con decoloración marginal profunda dentro de un período de 3 años [27]. Hosoya et al. [28] informó de que el tratamiento con fluoruro de plata diamina dio lugar a la decoloración negro de la caries infectadas primaria del esmalte y la dentina.
Por lo tanto, el objetivo de este estudio in vitro
fue evaluar las características tales como la resistencia al cizallamiento (SBS) , soporte /fallo adhesivo y el rendimiento estético de imprimación Transbond XT ™ después de la incorporación de diferentes tamaños de partículas de nanoplata o MICROSILVER.
Métodos Materiales
incisivos inferiores bovino fueron adquiridos de Rocholl GmbH (Aglasterhausen, Alemania), y se comprobaron en busca de grietas y /o caries. Palavit G® se adquirió de Heraeus Kulzer GmbH (Wehrheim, Alemania), cloramina-T de Sigma Aldrich Química GmbH (Taufkirchen, Alemania) y de la aguamarina de B. Braun Melsungen AG (Melsungen, Alemania). MicroSilver ™ BG-Med (tamaño de partícula 3,5 a 18 micras) se adquirió de Bio Puerta AG (Nuremberg, Alemania), nanoplata AgPURE ™ W50 (tamaño de partícula 12,6 a 18,5 nm) fue donado por ras materiales GmbH (Regensburg, Alemania), de descubrimiento ® soportes # 790-152-00 por diente 35 fueron donados por Dentaurum GmbH (Ispringen, Alemania), imprimación Transbond ™ XT y el adhesivo fueron adquiridos de 3 M Unitek ortodoncia Productos (Monrovia, CA, EE.UU.), gel de grabado Ormco® fue comprado de ORMCO (Orange, CA, EE.UU.) y Zircate® profilaxis Pega fue adquirido de Dentsply de Trey GmbH (Konstanz, Alemania). Todos los productos químicos fueron almacenados de acuerdo con las instrucciones del fabricante. MyBestPlay Todos los materiales se enumeran en la Tabla 1 1.Table Los materiales utilizados en este estudio
material
Fabricante
bovina mandibular incisivos
Rocholl GmbH; Aglasterhausen; Alemania
Palavit G®
Heraeus Kulzer GmbH; Werheim; Alemania
MicroSilver ™ BG-Med (tamaño de partícula 3,5 a 18 micras) guía empresas Bio Puerta AG; Nuremberg; Alemania
Nanosilver AgPURE ™ W50 (tamaño de partícula 12,6 a 18,5 nm) guía empresas ras materiales GmbH; Ratisbona; Alemania
discovery® soportes # 790-152-00 para los dientes 35
Dentaurum GmbH & amp; Co. KG; Ispringen; Alemania
Transbond ™ XT primer y adhesivo
3 M Unitek ortodoncia productos; Monrovia; CALIFORNIA; EE.UU.
Ormco® grabado en gel
Ormco Corporation; Naranja; CALIFORNIA; EE.UU.
Zircate® profilaxis Pega
Dentsply De Trey GmbH; Constanza; Alemania
Cloramina-T hidrato de
Sigma Aldrich Química GmbH; Taufkirchen /Munich; Alemania
aguamarina
B. Braun Melsungen AG; Melsungen; Alemania
muestras y preparación de las soluciones madre de microplata y nanoplata
bovino incisivos inferiores fueron incorporados en Palavit G® resina curada químicamente. La superficie labial se coloca hacia arriba y paralela a la resina. Los dientes se almacenaron en solución de cloramina-T 0,5%.
De uso médico de microplata partículas una gama de 0,1 a 0,5% w /w se recomienda por el fabricante [30]. De acuerdo con las recomendaciones del fabricante, a 500 ppm (0,05% de partículas absoluto o 0,11% peso /peso [w /w]) partículas de nanoplata se deben utilizar para la inhibición bacteriana significativa para revestimientos, 800 ppm (0,08% de partículas absolutos o 0,18% w /w ) en dispositivos médicos y 1.500 ppm (0,15% de partículas absolutos o 0.33% w /w) para lograr una fuerte reducción bacteriana sobre los productos sanitarios [31]. Por lo tanto, la adición de partículas de nanoplata de imprimación Transbond ™ XT en este estudio se basa en estas recomendaciones.
A comparar el rendimiento
in vitro de las partículas de nanoplata y MICROSILVER, las mismas concentraciones w /w fueron elegidos dentro de la recomendada concentración gama.
soluciones madre de 10% (w /w) microplata y 11% (w /w) nanoplata en aqua se prepararon. Antes del procedimiento de unión, se diluyeron las soluciones madre en el cebador Transbond ™ XT y se mezcla para la preparación de las soluciones de trabajo. Las soluciones se diluyeron como sigue:
0,1% (w /w) microplata solución: 1: 100 dilución (1 l microplata 10% [w /w] solución de reserva y el 99 de imprimación l)
0,3% (w /w): 3: 100 dilución (3 l microplata 10% [w /w] solución de reserva y el 97 de imprimación l)
0,11% (w /w) nanoplata solución: dilución 1: 100 (1 l nanoplata 11% [w /w] solución de reserva y el 99 de imprimación l)
0,18% (w /w): 1.8: 100 dilución (1,8 l nanoplata 11% [w /w] solución madre y 98,2 imprimación l)
0,33% (w /w) nanoplata solución: 3: 100 dilución (3 l nanoplata 11% [w /w] solución de reserva y el 97 de imprimación l)
Para SBS probar los dientes fueron divididos al azar en seis grupos de 16 muestras cada uno: grupo 1: imprimación, grupo de control
grupos experimentales 2-6 Grupo 2: imprimación con un 0,1% (w /w) microplata (tamaño de partícula 3,5 a 18 micras) guía empresas Grupo 3: imprimación con un 0,3% (w /w) microplata tamaño (3,5 partículas -18 micras) guía empresas Grupo 4: imprimación con un 0,11% (w /w) nanoplata (tamaño de partícula 12,6 a 18,5 nm) guía empresas Grupo 5: imprimación con 0,18% (w /w) nanoplata (tamaño de partícula 12,6 a 18,5 nm) guía empresas Grupo 6: imprimación con un 0,33% (w /w) nanoplata (tamaño de partícula 12,6 a 18,5 nm) guía empresas
procedimiento Bonding
grupo 1 (cebador, grupo de control): Los dientes se pulieron con Zircate® Prophy Paste, se enjuagaron con agua y se secó al aire. Las superficies de esmalte fueron luego grabadas durante 30 segundos con un gel de grabado de ácido fosfórico 37%, luego se enjuaga durante 10 segundos con agua y se secó al aire. Una fina capa de imprimación se aplica sobre la superficie del esmalte grabado al agua fuerte, y se ilumina con una fuente de luz (Poli Lux II, KaVo Dental, Biberach /Riss, Alemania) durante 15 segundos. Entonces, el adhesivo Transbond XT se aplicó a la base del soporte, el soporte se aplica
y presiona sobre la superficie del esmalte, y exceso de adhesivo se eliminó antes de la polimerización, que se realizó durante 20 segundos cada uno a partir de la lados mesial y distal. Grupos 2-6 (cebador con microplata o nanoplata, grupos experimentales): el procedimiento fue el mismo que en el grupo 1, pero en lugar de imprimación puro, 0,1% (w /w) o 0,3% (w /w) mezcla de cebador microplata o 0,11 % (w /w), 0,18% (w /w) o 0,33% (w /w) se utilizaron de la mezcla de imprimación nanoplata. La mezcla de cebador se mezcló a fondo con un cepillo y luego se aplican a cada diente. Comentario El procedimiento de adhesión se realizó por un investigador (SB) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Todos los dientes se unieron con discovery® soportes premolar inferior con una base de láser estructurado; estos soportes se utilizan a menudo como referencia de acuerdo con la norma DIN 13990 [32]. La superficie media del soporte en condiciones de servidumbre era 13,42 mm 2.
Una fotografía representativa (cámara Canon EOS650D) de un diente de servidumbre en la máquina de ensayo se muestra en la Figura 1. Figura 1 fotografías representativas de un diente posicionado en la máquina de ensayo. A: vista lateral; vista lateral B.
de adhesión al cizallamiento de medición de intensidad
resistencia de unión al cizallamiento se midió después de 24 horas de almacenamiento en agua destilada a 37 ° C con una máquina de ensayo Zwicki 1120 (Zwick, Ulm, Alemania). Una fuerza se aplica a la base del soporte en las alas en una dirección oclusogingival con una velocidad de cruceta de 1 mm /min. La fuerza se midió en Newtons (N). valores SBS se calcularon mediante la conversión de Newtons en megapascales (MPa).
Evaluación del adhesivo residual
La cantidad de adhesivo residual adherido a la superficie del esmalte se cuantificó utilizando el índice de adhesivo remanente (ARI) desarrollado por Årtun y Bergland [ ,,,0],33]. Las puntuaciones de IRA de todas las muestras fueron registrados dos veces por el mismo investigador utilizando un microscopio estereoscópico óptico (Leica Z6 APO, Leica Microsystems, Wetzlar, Alemania) con aumento de 10x. grupos que califican son: 0, sin adhesivo permanece en el diente; 1, a menos de 50% del adhesivo permanece en el diente; 2, más de 50% del adhesivo permanece en el diente; 3, todo el adhesivo permanece en el diente. Opiniones de microscopio electrónico de barrido de análisis (SEM) de los restos de adhesivo, las muestras se pulverizaron con oro /platino en un dispositivo de recubrimiento por pulverización catódica Edwards S150 B (Munich, Alemania) y se analizaron por imagen SEM ( Phenom FEI G1 y Phenom Software ProSuite, Eindhoven, Países Bajos).
Evaluación de las manchas de plata después de la desunión
después de pérdida de adherencia, las superficies de los dientes fueron inspeccionados por los ojos y bajo aumento de 10x con un microscopio estereoscópico óptico para la decoloración [28, 29]. el análisis estadístico
el análisis estadístico se realizó utilizando el software SPSS 21.0.0 (SPSS Inc., Chicago, IL).
para el cálculo del tamaño de la muestra para las mediciones de la SBS, un análisis de poder de ß-error (fuente de & gt; 80).. se realizó
se analizaron los datos de la SBS mediante la prueba de Kolmogorov-Smirnov, seguido de un análisis de varianza (ANOVA) y un análisis de supervivencia de Kaplan-Meier Empresas el ARI datos fueron analizados utilizando el prueba de Kolmogorov-Smirnov, seguido de la prueba de chi-cuadrado. análisis de puntos de plata se realizó mediante la prueba de Kolmogorov-Smirnov, seguido de la prueba de chi-cuadrado. Adicionalmente se realizan pruebas de chi-cuadrado se utilizaron para analizar las diferencias entre los grupos. P
los valores inferiores a 0,05 fueron considerados estadísticamente significativos.
Resultados
Muestra de cálculo del tamaño de Francia El poder de estas 16 muestras fue de 0,818. . Para este poder se necesita un mínimo de 15 muestras por grupo
medida de la resistencia de adhesión al cizallamiento
valores de SBS fueron los siguientes: Grupo 1 (control): 16,59 ± 6,82 MPa; el grupo 2 (imprimación + 0,1% microplata): 20,6 ± 4,19 MPa; el grupo 3 (imprimación + 0,3% microplata): 16.98 ± 4.84 MPa; el grupo 4 (imprimación + 0,11% nanoplata): 17.15 ± 5.92 MPa; grupo 5 (imprimación + 0,18% nanoplata): 20.09 ± 3.35 MPa; grupo 6 (imprimación + 0,33% nanoplata.): 16.44 ± 4.51 MPa Francia El test de Kolmogorov-Smirnov para SBS mostró una distribución normal en todos los grupos experimentales (estadístico = 0,045, df = 96, cuadrada media = 2.941, F = 0,905, p = 0,200
). Por lo tanto, se aplicó ANOVA. ANOVA de dos vías mostró ninguna diferencia estadísticamente significativa para SBS entre el grupo experimental y el grupo control (p Hotel & gt; 0,665). En general, no hay diferencias significativas podría ser detectado entre los grupos, así como por 2-por-2-comparaciones de todos los grupos. La Figura 2 muestra los resultados del análisis de supervivencia de Kaplan-Maier. La estadística descriptiva y los resultados de la prueba de ANOVA se presentan en la Tabla 2. La Figura 2 Kaplan-Meier análisis de supervivencia para todos los grupos experimentales. sobre Table 2 Estadística descriptiva de los grupos y comparación de los valores de la SBS (ANOVA) Barcelona Grupos
n
media (DE) [MPa]
Rango [ ,,,0],MPa]
95% CI [MPa]
La mediana [MPa]
95% CI [MPa]
TB
16
16,59 (6,82) guía empresas 7,03-31,38 13,25-19,94
15.76
12,55-18,97
TB + 0,1% (w /w) μAg
16
20,6 (4,19) guía empresas 14,86-30,49
18.55- 22.66
20.00
17,45-22,55
TB + 0,3% (w /w) μAg
16
16.98 (4,84)
6,9 a 25,78
14,61-19,35
17.55
14,14-20,96
TB + 0,11% (w /w) NAG
16
17.15 (5.92) guía empresas 11,02-30,18 14,25-20,05
14.34
9,15-19,53
TB + 0,18% (w /w) NAG
16
20,09 (3,35)
14.05 -25.28
18,45-21,74
19.99
17,66-22,32
TB + 0,33% (w /w) NAG
16
16,44 (4,51) guía empresas 10,55-25,74 14,23-18,65
15.34
8,48-22,20
ANOVA:. suma de cuadrados = 273,5, df = 93, cuadrada media = 2.941, F
-valor = 0,905, P = 0,665
-valor
Evaluación de restos de pegamento
la Tabla 3 presenta los resultados de IRA. La determinación de 2 veces de las puntuaciones de IRA en dos días diferentes mostró ninguna diferencia en absoluto, y la fórmula de Dahlberg aplicada genera un error de [34] .Tabla 3 Adhesivo índice cero remanente (ARI) guía empresas puntaje ARI
Tarjetas telefónicas Las diferencias de grupo
Grupos
0
1
2
3
La mediana
TB
0
7
6
3
2
Un
TB + 0,1% (w /w) μAg
0
9
4
3
1
Un
TB + 0,3% (w /w) μAg
0
8
página 6
2
1
Un
TB + 0,11% (w /w) NAG
0
6
6
4
2
Un
TB + 0,18% ( w /w) NAG
0
7
4
5
2
Un
TB + 0,33% (w /w) NAG
0
7
5
4
2
Un
ARI puntuaciones de 0, sin adhesivo permanece en el diente; 1, a menos de 50% de adhesivo permanece en el diente; 2, más de 50% de adhesivo permanece en el diente; 3, todo el adhesivo permanece en el diente. MyBestPlay Todos los grupos que no son significativamente diferentes entre sí se muestran con las mismas letras (chi-cuadrado = 1,599, df = 5, p = 0,901)
.
no hubo casos de IRA una puntuación de 0 representa la ausencia de adhesivo sobre el diente. La mediana de la ARI para el control y todos los grupos experimentales con partículas de nanoplata fue de 2, mientras que los grupos experimentales con partículas MICROSILVER revelaron una mediana de 1. La prueba de Kolmogorov-Smirnov mostró una distribución normal de las puntuaciones de IRA (Estadística = 0,290, df = 96 , p = 0,772
). La prueba de chi-cuadrado entre todos los grupos ensayados mostró ninguna diferencia estadística (p = 0,901).
Evaluación de la decoloración después de desunión fotos: por ojo Control visual sin manchas de plata eran visibles en cualquier diente. Menores de 10 años se detectaron aumentos los estereomicroscópico manchas pequeñas de plata en la cartilla de reposo /adhesivo en la superficie de los dientes en todos los grupos experimentales (Tabla 4, Figura 3) .Tabla 4 Número de muestras que revelan las manchas detectadas en el marco de plata 10 × magnificación Barcelona Grupos
Número de muestras
diferencia Grupo
TB
0
Un
TB + 0,1% (w /w) μAg
2
Un
TB + 0,3% (w /w) μAg
1
Un
TB + 0,11% (w /w) NAG
4
B
TB + 0,18% (w /w) NAG
6
B
TB + 0,33% (w /w) NAG
9
Francia B
Grupos con las mismas letras no son estadística diferente (chi-cuadrado carta de prueba A: chi-cuadrado = 2,089, df = 2, p = 0,352
; chi-cuadrado carta de prueba B: chi-cuadrado = 3,241, df = 2, p = 0,198
). prueba de chi-cuadrado en todos los grupos muestra una diferencia estadísticamente significativa (ji cuadrado = 20.074, df = 5, p
= 0,01).
Figura 3 microscópica Representante y las imágenes de SEM de las puntuaciones medias de IRA. A-F: aumento de 10x; Flechas marca detectaron manchas de plata. a-f homólogos SEM (45 ×) de la misma muestra. A y una imprimación (Transbond XT); B y B, imprimación y el 0,1% (w /w) microplata; C y el cebador C y 0,3% (w /w) microplata; D y d, cebador y 0,11% (w /w) nanoplata; E y E, cebador y 0,18% (w /w) nanoplata; F y F, el cebador y 0,33% (w /w) nanoplata. México La prueba de Kolmogorov-Smirnov no mostraron una distribución normal para las manchas de plata (Estadística = 0,142, df = 96, p = 0,000
). La prueba de chi-cuadrado entre todos los grupos de prueba mostró una diferencia estadísticamente significativa (ji cuadrado = 20.074, df = 5, p = 0,01
), revelando significativamente más dientes con manchas de plata en los grupos experimentales con partículas de nanoplata aplicados cuando se compara con la de los grupos experimentales con partículas incorporadas MICROSILVER control o. La prueba de chi-cuadrado entre la cartilla, la cartilla y el 0,1% (w /w) microplata y el cebador y 0,3% (w /w) microplata no mostró una diferencia estadísticamente significativa (p = 0,352
). La prueba de chi-cuadrado entre el cebador y 0,11% (w /w) nanoplata, imprimación y 0,18% (w /w) nanoplata y el cebador y 0,33% (w /w) nanoplata fue estadística y significativamente diferente al control y los grupos experimentales con partículas añadidas MICROSILVER (p = 0,001)
.
Discusión
en base a los resultados in vitro
en, ni SBS ni puntuaciones de las IRA se vieron afectados significativamente por la adición de MICROSILVER o nanoplata partículas de diferentes tamaños. Ahn et al. [20] añadieron 250 ppm y 500 ppm de nanopartículas de plata con un tamaño menor que 5 nm en combinación con partículas de sílice de tamaño nanométrico a adhesivos compuestos experimentales auto-mezclado. Ellos encontraron que los valores medidos en SBS premolares humanos no difirieron significativamente entre los adhesivos compuestos experimentales y adhesivos convencionales. Aunque hemos añadido nanopartículas de plata más ampliamente y en concentraciones mayores que Ahn et al. [20], se encontró que los resultados de la SBS eran comparables con las de ellos [20]. Siguiendo nuestro procedimiento experimental, Akhavan et al. [21] añaden nanopartículas de plata a imprimación Transbond ™ XT; sin embargo, se utilizan concentraciones más altas (1%, 5% y 10%) de las nanopartículas de plata y se añaden 5% de hidroxiapatita a las mezclas. Además, midieron SBS en premolares humanos con una velocidad de cruceta de 0,5 mm /min por lo que es imposible comparar sus valores SBS con el nuestro [35]. Sadat-Shojai et al. [36] se describe la influencia sobre la resistencia de la unión de las nanopartículas incorporadas en materiales de unión dentina. SBS aumentó con la incorporación de 0,2% nanopartículas de hidroxiapatita y después disminuyó a concentraciones más altas [36]. Los autores discuten si las mayores concentraciones de nanopartículas podrían agregarse y, por tanto, interactuar con el nanomaterial, lo que podría conducir de nuevo a defectos en la matriz. De acuerdo con Sadat-Shojai et al. [36] y Ahn et al. [20], las concentraciones de partículas de nanoplata de hasta 0,33% (w /w) no interfieren con la matriz de la imprimación o adhesivo. La concentración utilizada por Akhavan et al. [21] podría estar en un rango que podría afectar posiblemente la matriz. Empresas El puntuaciones registradas IRA varió entre 1 y 3 en los diferentes grupos y no difirió significativamente entre los grupos control y experimentales. Ni la presencia de partículas MICROSILVER ni partículas de nanoplata afectó a la insuficiencia soporte /adhesivo. O'Brien et al. [37] encontró que la evaluación de la puntuación ARI es bastante subjetiva. Por lo tanto, las puntuaciones de las IRA se midieron dos veces. No se encontraron diferencias en estas dos determinaciones.
Muchos estudios han investigado las partículas de nanoplata y sus posibles efectos en las bacterias o células animales [24,38-43]. En nuestro estudio in vitro
en que no investigó la liberación de nanoplata en la saliva, pero se debe considerar estos estudios. La plata en micropartículas examinado no es citotóxico y está certificado para aplicaciones médicas (ISO 10993-5) [44,45]. Bürgers et al. [46] en un estudio in vitro
aplica microplata al material compuesto de resina de X-Flow (Dentsply De Trey). Ellos encontraron efectos anti-adherentes y antimicrobianas significativas en la superficie de material compuesto [46]. Los compuestos de plata o de plata
se han añadido varias veces para materiales de restauración en odontología restauradora [27,28,47]. Desafortunadamente, el uso de estos materiales resultó en restauraciones y /o dientes [28,29,47] descoloridos. Kawasaki et al. [47] compararon el efecto protector de fluoruro de plata diamina con hexafluorosilicato de amonio en la desmineralización de la dentina. Diamina fluoruro de plata produjo una profundidad desmineralizada menos profundo, pero tiñe los dientes de negro debido a sulfonization. La investigación de la ubicación de las dos soluciones, se encontró que la plata del fluoruro de plata diamina cubrió la superficie del mineral y el silicio de la hexafluorosilicato de amonio se encuentra en la lesión mineral [47]. En nuestro estudio, la decoloración visible de plata no se detectó después de la desunión. Sin embargo, mediante el uso de aumento de 10x, encontramos los dientes con manchas de plata ligeramente dispersos en el área de imprimación /adhesivo residual. Adición de micropartículas de plata (3,5 a 18 micras de tamaño de partículas) a la imprimación como resultado una ligera aparición de manchas de plata sin ningún efecto estadísticamente relevante. El número de dientes con manchas de plata aumentó significativamente con la adición de nanopartículas de plata (tamaño de partícula 12,6-18,5 nm). Cheng et al. [48] añaden nanopartículas de amonio cuaternario y plata a la imprimación de adhesivo Scotchbond Multipropósito. Se observó que este cebador tenía estética /color similar a los del control [48]. Estos autores concluyeron que el área de superficie alta de las nanopartículas de plata proporcionó un efecto potente en un nivel de carga baja para evitar la influencia negativa sobre el color y las propiedades mecánicas. En un segundo estudio, Cheng et al. [49] añaden nanopartículas de plata (tamaño de partículas de 2,7 nm) a la resina que contiene fosfato de calcio amorfo. Ellos encontraron que la adición de 0,042% nanopartículas de plata imparte ninguna influencia sobre el color o la resistencia a la flexión. Mayores concentraciones de 0,175% revelaron un color marrón y una caída en la fuerza. Por lo tanto, se recomienda la adición de solamente una baja concentración de nanopartículas de plata. Besinis et al. [50] aplicado recientemente una solución de nanopartículas de plata (tamaño de partícula 56,8 ± 18,6 nm) y una solución de nitrato de plata (tamaño de partícula 52,8 ± 18,6 nm) a los discos de dentina humanos. Ambas soluciones exhiben un efecto antibacteriano [50], pero sólo la solución de nanopartículas de plata lograron una coincidencia de color clínicamente aceptable, mientras que la solución de nitrato de plata produjo resultados estéticamente inaceptables [50]. Se necesitan más estudios para investigar si los puntos observados en este estudio in vitro
pueden ser removidos mediante la limpieza después de desunión. Si es así, la presencia de partículas de plata podría ser una oportunidad para reducir la colonización bacteriana durante el tratamiento de ortodoncia.
Utilizamos incisivos bovinos de este estudio in vitro
en, debido a la dificultad de obtener los dientes humanos intactos de calidad y cantidad suficiente . Este uso es aceptable para los estudios de unión en lugar de dientes humanos de acuerdo con la norma DIN 13990 [32], y estos dientes se utilizan a menudo en los estudios [51]. Hay similitudes entre bovina y esmalte humano en la orientación de los cristalitos, las dimensiones de los prismas exteriores, y la composición de proteína de la matriz del esmalte [52]. Todos los autores leído y aprobado el manuscrito final.
