Resumen Antecedentes
Candida albicans
s es un hongo dimórfico que forma parte de la flora microbiana comensal de la cavidad oral. Cuando las defensas inmunitarias del huésped están deteriorados o cuando la flora microbiana normal se perturba, C. albicans
desencadena infecciones recurrentes de la mucosa oral y la lengua. Recientemente, hemos producido NOD /SCID.e2f1
- /- ratones que muestran hiposalivación, disminución del flujo proteína salival, carecen de IgA e IgG en la saliva, y han disminuido las células NK. Nuestro objetivo fue caracterizar C. albicans
la formación de biopelículas y la infección en ratones
Métodos
NOD /SCID.e2f1
-. /- Ratones fueron utilizados como un modelo animal para C. albicans
infección. C. albicans
soluciones de formularios de levadura y de hifas se introducen en la cavidad oral después de la desinfección por clorhexidina.
Resultados
Los números de C. albicans
colonizados y la disminución de una manera dependiente del tiempo en ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ después de la inoculación. Sin embargo, los niveles de colonización fueron mayores en los ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ de ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones. En los ratones alimentados con 1% de agua de sacarosa antes de la inoculación, C. albicans
muestra fue altamente contaminada por microorganismos indígenas en la cavidad oral; y no estaba en los ratones alimentados con agua de sacarosa. La colonización de C. albicans
no fue influenciada por la contaminación de microorganismos autóctonos. La forma de las hifas de C. albicans
restringían la restauración de microorganismos autóctonos. La saliva disminuido en los ratones NOD /SCID.e2f1
- /- no aumentó la colonización de C. albicans
en comparación con los ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones. Sugerimos que el receptor en la saliva de C. albicans
no pueden ofrecer en medida suficiente de la cavidad oral de ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones.
Conclusión México La proteína de la saliva flujo puede ser muy importante para C. albicans
colonización inicial, donde los microorganismos autóctonos no afectan a la colonización de la cavidad oral.
Palabras clave albicans Candida
NOD /SCID.e2f1
- La saliva de ratones Colonización sacarosa Electrónico material complementario
La versión en línea de este artículo (doi:. 10 1186 /1472-6831-12-36). contiene material complementario, que está disponible para los usuarios autorizados
Antecedentes
Candida spp
. ¿Cuáles son comensales humanos comúnmente colonizan las superficies mucosas humanas y pueden participar en la formación de biopelículas en las mucosas y cutáneas superficies, así como en las superficies del dispositivo, por ejemplo, prótesis dentales, catéteres venosos, y catéteres urinarios [1 -7]. Sin embargo, bajo ciertas condiciones, el hongo causa una variedad de infecciones de infecciones de las mucosas leves a candidiasis invasiva en peligro la vida [8]. Muchas manifestaciones de candidiasis están asociados con la formación de biopelículas en los tejidos del huésped (por ejemplo, la candidiasis oral) y en mora en dispositivos médicos (venosa central de la candidemia asociada al catéter) [9]. Una característica clínicamente significativa de biopelículas microbianas es su mayor resistencia a las terapias con medicamentos antimicrobianos [10-12].
Candida albicans
s es comensal en las superficies mucosas humanas y es una de las infecciones nosocomiales más importantes de los seres humanos. C. albicans
es la causa más común de diversas formas de candidiasis [13]. En las condiciones de la disfunción inmune, colonizando C. albicans
puede convertirse en un patógeno oportunista que causan infecciones de las mucosas recurrentes de la cavidad oral y de la vagina en huéspedes inmunocomprometidos, tales como los pacientes de edad avanzada y el VIH-positivas [14, 15]. C. albicans es un hongo
pleiomorphic que tiene la capacidad de transición entre la levadura celular y las formas filamentosas esenciales para la virulencia; Por lo tanto, las formas filamentosas constituyen un componente central en la patogénesis de C. albicans
. Varios modelos se han establecido para estudiar la candidiasis, Candida incluyendo
interacciones celulares -epithelial utilizando líneas celulares epiteliales humanas inmortalizadas en cultivo de tejidos [16-18], donde C. albicans
se adhiere a las células epiteliales de la mucosa oral y también invade estas células. Invasión en el límite de las células epiteliales de la mucosa oral es característico de ambos modelos animales humanos y experimentales de la candidiasis orofaríngea [19-22].
Una reciente investigación desarrollada NOD /SCID fondo E2F-1 ratones deficientes (NOD /SCID.e2f1
- /-) (células T y B no se desarrollan en la pérdida de la función de E2F-1 en los ratones NOD /SCID fondo no tienen una respuesta auto-reactiva) [23]. El NOD /SCID.e2f1
- /- ratones han disminuido el volumen de la saliva, la falta de sIgA e IgG en la saliva, en comparación con NOD.e2f1
+ /+ ratones. Este ratón se han reducido las células NK en comparación con ratones SCID y puede ser un modelo animal útil para el estudio de la infección oral, la colonización y la formación de biopelículas. Además, los injertos de tejido humano se pueden utilizar en este ratón. Estos ratones tienen una supervivencia a largo, ya que no desarrollan enfermedades sistémicas como la diabetes mellitus insulino dependiente y el síndrome de Sjögren en comparación con la cepa parental NOD.e2f1
- /- ratones. Recientemente, hemos encontrado estos ratones son altamente susceptibles a la caries dental patógeno; Streptococcus mutans
la colonización cuando NOD /SCID.e2f1
- /- ratones se trataron previamente con la saliva humana o sIgA utilizando una concentración baja (1%) suplemento de sacarosa; S. mutans
la formación de biopelículas se produjo cuando los ratones fueron suministrados 1% de agua sacarosa y una dieta no sacarosa [24]. Por lo tanto, estos ratones pueden ser un modelo animal útil para C. albicans
infecciones en la cavidad oral, ya que se han reducido volumen de saliva y se vean afectados en la actividad inmune por T, células B y células NK. Modelos de infección de mamíferos, en particular, los modelos de ratón, se utilizan comúnmente para estudiar la interacción huésped-patógeno de los agentes patógenos humanos. Los modelos murinos para C. albicans superficiales y sistémicas
infecciones se han desarrollado y se usan ampliamente para estudiar la patogénesis y para determinar la virulencia de C. albicans definidos
mutantes [25, 26]. Saliva incluye diversos agentes anti-microbianos y es probable que desempeñe un papel importante en la resistencia a la infección por C. albicans
en la cavidad oral. ratones inmunodeficientes tales como Rag1 - /- y ratones CB-17.SCID se han utilizado como un modelo de infección por C. albicans
[27]. Sin embargo, se sabe muy poco acerca de la contribución de la saliva en la iniciación de C. albicans
la colonización y la infección de la mucosa de la cavidad oral, utilizando el modelo de ratón. En este estudio, se investigó la colonización inicial de C. albicans
en el modelo animal usando ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones.
Métodos
cepas y condiciones de cultivo México La cepa utilizada fue C. albicans
SC5314. C. albicans
se incubó durante 24 horas a 37 ° C en levadura peptona dextrosa (YPD, 2% de peptona Bacto, dextrosa al 2% y 1% de extracto de levadura, Becton Deckinson, Sparks, MD) de caldo antes del comienzo de cada experimento . La forma de levadura de C. albicans
fue predominante en la cultura con YPD durante la noche; mientras que la forma micelial se produjo en RPMI1640 (Gibco-Invitrogen, Grand Island, NY) con 5% de SFB en cultivo durante la noche (Figura 1A). Los dos tipos de células se utilizaron para inocular la cavidad oral. Figura 1 La observación de C. albicans la levadura y de hifas, formas y números de colonias después de la inoculación. C. albicans
formas de levadura y de hifas se tomaron fotografías en microscopio después de la incubación de ellos en YPD y RPMI1640 con FBS al 5% (A). Se observó la colonización en las placas de agar YPD agar BHI y se vierte muestras de frotis de la cavidad oral de NOD /SCID.e2f1
- /- ratones alimentados con 1% de agua sacarosa a 60 min después de la inoculación (B). Blanco y negro flecha indican C. albicans y
colonia microorganismo indígena, respectivamente. Estas colonias se tomaron imágenes en el microscopio estereoscópico. Los datos eran representativas en tres ensayos independientes. Las muestras se tomaron muestras de las cavidades orales de cuatro 4 meses de edad, hembra NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1 CD - /- ratones a los 30, 60, y 90 minutos después de la inoculación utilizando la forma de levadura. Las muestras swabbed en ratones alimentados con agua (C) o 1% de agua sacarosa (D) durante la noche antes de la inoculación se vertieron sobre agar YPD. Las muestras swabbed en ratones alimentados con agua (E) o 1% de agua (F) antes de la inoculación se vertieron en agar BHI. datos de CFU se obtuvieron a partir de tres experimentos independientes con cuatro ratones de cada cepa. Los valores se expresan como la media ± desviación estándar (DE) de los datos. Los asteriscos muestran diferencias significativas (* P
& lt; 0,05) en C y D y diferencias significativas (** & lt; 0,05). Entre agua (E) y 1% de agua sacarosa (F) para beber
Animales
Heterocigotos ΔE2F-1 NOD /SCID fueron criados para generar homocigotos NOD ΔE2F1 /ratones SCID. Tres cepas de ratones NOD /SCID (E2F1
+ /+, +/- y - /-) se identificaron mediante PCR [23]. Todos los ratones utilizados eran de sexo femenino, de 4 meses de edad, y se mantuvieron de acuerdo con las directrices para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio del Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Los protocolos experimentales (# 211125) fueron aprobados por el Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas del Comité de Recursos Animales.
muestreo bacteriana y la unidad formadora de colonias (UFC) estima
inoculación, el muestreo y las estimaciones CFU bacterianas se realizaron utilizando los procedimientos y condiciones descrito anteriormente [28 a 30]. C. albicans
formas de levadura y de hifas se cultivaron en YPD y RPMI1640 con 5% FBS caldo durante la noche y se lavaron dos veces con solución salina tamponada con fosfato estéril (PBS). En nuestro estudio anterior demostramos S. mutans
recuentos de colonias fueron significativamente mayores que la de otros estreptococos (es decir, S. sanguis, S. sobrinus, España y S. salivarius
) en ratones que ingiere 1% de sacarosa en agua un día antes de la inoculación [28]. De la misma manera, NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones también se les dio agua potable que contiene 1% de sacarosa (menor que la concentración usual en jugo) un día antes de la inoculación de C. albicans
para fomentar una rápida adhesión de C. albicans Hoteles en condiciones parecido a un ambiente oral natural. Por el contrario, se utilizó agua potable (sin sacarosa) como control. Clorhexidina (CHX; 0,2%) empapado hisopos de algodón estériles se utilizan para desinfectar las cavidades orales de los ratones, incluyendo los dientes, lengua y superficies mucosas. La cavidad se lavó inmediatamente con PBS estéril. Esta desinfección se confirmó como se observaron pocas células bacterianas en los ratones a los 30, 60, y 90 min después de la inoculación. C. albicans
soluciones de formularios de levadura y de hifas fueron introducidos en las cavidades orales de tres hembras a los 4 meses de edad, a una concentración final de 5 × 10 9CFU en 250 l de PBS durante un periodo de 1 min. Después de la inoculación, se recogieron muestras de la lengua y la mucosa bucal con una bola de algodón estéril a los 30, 60 y 90 minutos después de la inoculación y se sumergieron en 2 ml de PBS. Las muestras en PBS estéril se sonicaron utilizando dispersión de ultrasonidos (potencia de salida, 60 W) durante 10 s, y después se vertió sobre agar YPD para determinar C. albicans
número de colonias y en agar BHI para C. albicans y
indígena número de colonias de microorganismos (Figura 1B). UFC se determinó contando las colonias en el agar YPD después de 24 horas y en las placas de agar BHI después de 48 h de incubación utilizando aeróbica a 37 ° C. El análisis estadístico
Todos los datos fueron analizados utilizando el paquete estadístico SPSS para Windows para ( versión 100, Chicago, IL). Se utilizó la prueba t de Student para comparar los datos de control y los datos para C. albicans
después de la incubación. * P indican
-valores inferior a 0,05 y ** en 0.01 se consideró significativo.
Resultados
Efectos de la disminución de la saliva y microorganismos orales indígenas en las C. albicans
colonización inicial
saliva se cree que desempeñan un papel significativo en la unión y colonización de C. albicans
en el diente y la mucosa oral. Se evaluaron los efectos de los diferentes volúmenes de saliva en C. albicans
colonización usando tipo salvaje ratones NOD /SCID y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones. Los números de UFC de C. albicans
forma de levadura colonizado en la cavidad oral después de la desinfección por clorhexidina. C. albicans
colonización tanto en ratones fueron significativamente disminuyó de 30 min a 90 min después de la inoculación en ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones cuando fueron tratados con o sin agua de sacarosa (Figura 1C y RE). La colonización también se redujo; pero estas reducciones no fueron significativamente diferentes en ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones en comparación con
+ /+ ratones NOD /SCID.e2f1. C. albicans
números de CFU fueron significativamente inferiores en ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones que los de los ratones NOD /SCID ratones de tipo salvaje alimentados después de los 60 y 90 minutos después de la inoculación (Figura 1C). Por lo tanto, la disminución de saliva se asocia con la colonización reducida de C. albicans
. Sin embargo, las diferencias significativas entre ratones NOD /SCID salvaje y ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones desaparecidas mediante la inclusión de sacarosa en el agua potable (Figura 1D). YPD fue utilizado como un medio selectivo para C. albicans
porque había una posibilidad de que algunos microorganismos autóctonos en ratones pueden contaminar la muestra limpiado después de la desinfección por clorhexidina.
BHI agar de recubrimiento también se utilizó para confirmar los niveles de contaminación por indígena microorganismos. El número total de C. albicans
indígenas y los microorganismos en el BHI agar fueron similares a los de las placas de YPD en el NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones con agua potable sin sacarosa y la dependiente del tiempo disminuyendo también fue similar en los números de colonias en YPD a los de BHI (Figura 1C y Figura 1E). Sin embargo, el número total de C. albicans
y microorganismos autóctonos aumentó significativamente en el sacarosa-agua en comparación con los no-sacarosa agua en NODSCID.e2f1
+ /+ ratones (Figura 1E y F). Sin embargo, no hubo diferencias significativas entre las muestras en cada tiempo de muestreo en el consumo de agua de sacarosa. En el caso de los ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones, unas pocas bacterias indígenas aumentaron significativamente mediante la adición de sacarosa en el agua potable, y la colonización no mostró diferencias significativas entre los tiempos de muestreo (Figura 1E y F). Por el contrario, con la sacarosa en el agua potable, se encontraron muchos microorganismos indígenas porque los números CFU en BHI fueron significativamente más altos que los de YPD utilizando la misma muestra (Figura 1F). Por lo tanto, sacarosa ayuda a la restauración dependiente del tiempo de microorganismos indígenas después de la desinfección por clorhexidina, pero no afecta el aumento de la infección por C. albicans
. Además, la disminución de la saliva no puede ayudar a la colonización de C. albicans
o restauración de las bacterias indígenas en ratones NOD /SCID.e2f1
- /-. Sistema de ratón
Comparación de la colonización entre la levadura y las formas de hifas en el ratón cavidad oral Hoteles en infección grave por C. albicans
, la forma de las hifas tiene un papel muy importante en comparación con la forma de levadura. Por lo tanto hemos probado la colonización oral de la forma de las hifas en comparación con la forma de levadura en 60 min después de la inoculación. Las colonizaciones de C. albicans
eran similares en las formas de hifas y levaduras tanto en ratones (Figura 2A y B). La colonización de microorganismos totales fue significativamente mayor con el agua potable que con sacarosa no-sacarosa agua en forma de levadura, pero no hubo diferencia en la forma de las hifas en NOD /SCID.e2f1
ratones + /+ (Figura 2C y D). El volumen de saliva disminuido en NOD /SCID.e2f1
- /- ratones y forma hifas tanto en ratones no indujo los efectos del agua potable de sacarosa en la proporción de la forma de levadura en NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones. Por lo tanto, la forma del volumen de saliva y de las hifas de C. albicans
puede restringir la restauración de microorganismos indígenas. Figura 2 Comparación de la forma de levadura y la forma de las hifas en el número de colonias de C. albicans. Las muestras se extrajo de las cavidades orales a los 60 minutos después de la inoculación de la forma de levadura o en forma de hifas de cada cuatro 4 meses de edad, hembra NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1 CD - /- ratones alimentados agua (a) o 1% de agua sacarosa (B) durante la noche se vertieron sobre agar YPD. Otras muestras en ratones alimentados con agua (C) o 1% de agua sacarosa (D) se vertieron en agar BHI. datos de CFU se obtuvieron a partir de tres experimentos independientes con cuatro ratones de cada cepa, y los valores se expresan como la media ± desviación estándar (DE) de los datos. Los asteriscos indican diferencias significativas (P * Hotel & lt; 0,05) en A y diferencias significativas (** & lt; 0,05) entre el agua (C) y 1% de agua sacarosa (D) para beber
Discusión sobre The. colonización de C. albicans
depende de varios factores: la adquisición o entrada de las células en la cavidad oral, la unión y el crecimiento de estas células, la penetración de los tejidos, y la eliminación de las células de la cavidad oral. En este estudio, los ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones con disminución de saliva mostró la colonización negativo de C. albicans
en comparación con los ratones NOD /SCID tipo salvaje. En la superficie del diente recubierta con una película salival interacciones adherencia microbiana pueden implicar moléculas de saliva adsorbidas. La película saliva aumenta la adherencia de C. albicans
células a perlas de HA [31]. Otros investigadores han demostrado previamente la presencia de suero y salivales unas películas puede ayudar a C. albicans
colonización en tiras acílicos y materiales de revestimiento para dentaduras postizas [32, 33]. Por lo tanto, se especula que los ratones NOD /SCID producen la saliva que contiene receptores que se unen a C. albicans
y crear una superficie de la mucosa del medio ambiente saliva a exponer en la cavidad oral.
En contraste, las defensas innatas incluyen la barrera epitelial y anti compuestos -candidal en la saliva tales como lisozima [34], histatinas [35], la lactoferrina [36], y la calprotectina [37, 38]. las defensas del huésped innatas son críticos en el mantenimiento de la salud oral. Saliva incluye lysozome, lactoferrina, y histatinas que se cree que son las tres principales proteínas antimicrobianas no inmunológicos para modular Candida
poblaciones en la cavidad oral [39]. Sin embargo, la saliva disminuido modula negativamente C. albicans
poblaciones en este estudio. En nuestro estudio anterior, la saliva de ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ y E2F1
- /- ratones se caracterizó en la concentración de proteína /ml, las actividades de amilasa, y la concentración de proteína por minuto /ml [24]. No hubo diferencias significativas en la concentración de proteína y actividad de la amilasa entre los ratones. La concentración de proteína por minuto en 1 ml de saliva fue significativamente menor en los ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones en comparación con ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones. Aquí no se midió la actividad de lisozima, lactoferrina, o histatinas en la saliva de ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones NOD y /SCID.e2f1
- /- ratones, pero las actividades de la inmunidad innata y los receptores a C. albicans
datos adjuntos no pueden ser suficientemente dentro de la cavidad oral de ratones NOD /SCID.e2f1
- /- en comparación con los ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ ratones. proteínas salivales de ratón son poco existían en ratones NOD /SCID.e2f1
- /- ratones. En su conjunto, la saliva del ratón funciona de manera positiva para la colonización inicial de C. albicans de
en lugar de proteger de la inmunidad innata, una función opuesta a S. mutans
la colonización [24]. México La colonización disminuyó en un tiempo forma dependiente y sin los efectos de la diferencia de volumen de saliva en ratones NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones. La colonización puede ser reducida por los efectos de lavado con un volumen apropiado de saliva. Por otra parte, la inmunidad mediada por células juega un papel importante en la resistencia a la mucosa candidiasis [40, 41]. La superficie de la mucosa proporciona una barrera protectora contra las infecciones bacterianas y fúngicas de la cavidad oral. Las beta-defensinas son pequeños péptidos anfipáticos catiónicos que exhiben un amplio espectro de actividad contra bacterias gram-positivas y gram-negativas y especies de hongos [42]. NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones no tienen células T y B maduras pero tienen una barrera protectora con la inmunidad mediada por células. Por lo tanto, la inmunidad mediada por células no puede ser asociado con la diferencia de C. albicans
colonización entre NOD /SCID.e2f1
+ /+ y NOD /SCID.e2f1
- /- ratones. La función positiva para C. albicans
en la cavidad oral indica un modelo animal útil para la colonización inicial de C. albicans
en ratones de tipo salvaje NOD /SCID en comparación con NOD /SCID.e2f1
- /-. ratones
informe anterior sugiere que la flora bacteriana indígenas podrían suprimir la extensión de la colonización de C. albicans
al interferir con su capacidad de adherirse a la mucosa superficial en comparación con las ratas libres de gérmenes y de rata convencional [ ,,,0],43]. Esto se explicó al competir por los sitios receptores epiteliales requeridas para la unión Candida o alterando enzimáticamente las superficies de las células de levadura. Nuestro sistema de modelo de ratón mediante la inoculación oral de C. albicans
es diferente del anterior informe utilizando germen de rata libre y convencional e indica un mejor modelo para explorar los efectos de los componentes salivales y microorganismos autóctonos en la colonización bajo la condición natural de fondo que el sistema anterior modelo . La sacarosa funciona como sustrato para la producción de glucano por estreptococos orales. El agua potable de sacarosa antes de la inoculación proporciona una fuente de glucano para la restauración de los microorganismos indígenas. CHX era uniformemente eficaz contra cepas de microorganismos transmitidas comunes. El tratamiento con CHX desinfectar el microorganismo indígena antes de la inoculación en tanto no-sacarosa agua potable y sacarosa [44, 45]. Sin embargo, los microorganismos autóctonos contaminados la muestra de C. albicans
en los ratones alimentados con 1% de agua sacarosa. La colonización de C. albicans
no se vio afectada por la restauración de microorganismos indígenas. Por lo tanto, la colonización inicial de C. albicans
no se ve afectada por posterior colonización de microorganismos indígenas en la cavidad oral. Se sugiere que las células de C. albicans colonizados
no se eliminan por el efecto enzimática o física por microorganismos indígenas.
Células de levadura se adhieren de forma más eficaz que las células hypal a las células endoteliales en condiciones de flujo [46] . Aunque las células bloqueadas en el estado filamentoso también muestran una virulencia reducida [47-49], la capacidad de formar hifas es importante para C. albicans
para causar la enfermedad después de la difusión: celdas bloqueadas en forma de levadura se mantienen hasta que no virulenta que se les permite forma hifas, después de lo cual, los ratones sucumben a la infección [50]. C. albicans
hifas se vean afectados en su capacidad para adherirse a la cavidad oral humana por la bacteria Streptococcus gordonii
[51]. Para colonizar e infectar el medio ambiente oral, células de levadura se deben primero adherirse a las células huésped y los tejidos o materiales protésicos dentro de la cavidad oral o co-agregado con la microbiota oral de [52-54]. En este estudio, la forma hifas de C. albicans
mostró resultados similares como la forma de levadura, pero la restauración de los microorganismos autóctonos fue más débil con la forma de las hifas de que con la forma de levadura. Esto puede indicar efectos de restricción por la forma de las hifas en la restauración.
Ofrecemos aquí un nuevo sistema de modelo animal original, que puede ser un modelo útil para explorar la colonización inicial de C. albicans oral. Francia El flujo de proteínas salivales pueden desempeñar papeles importantes en el mantenimiento de la conducta comensal de C. albicans
y convertirse en un patógeno oportunista con la condición de inmunodeficiencia tales como SCID. Se requiere que estos ratones para estas investigaciones para determinar varios factores que contribuyen a la susceptibilidad para las infecciones por Candida.
Conclusiones
En conclusión, el flujo de saliva proteína puede ser muy importante para C. albicans
colonización inicial, donde el microorganismos indígenas no afectan a C. albicans
colonización inicial en la cavidad oral.
Declaraciones
Agradecimientos los autores agradecen a
Chung Xi para el apoyo técnico, las discusiones votos, y el asesoramiento. Este trabajo fue apoyado en parte por una subvención-en-Ayudas para el Desarrollo de la Investigación Científica (19791360, 22791822, 21390506 y); y el Ministerio de Salud, Trabajo y Bienestar (H22-Iryo ippan-026). Este trabajo también fue apoyado en parte por una subvención del Proyecto asistido por la Fundación de Investigación Estratégica de Universidades Privadas del Ministerio de Educación, Cultura, Deportes, Ciencia y Tecnología de Japón (MEXT), 2008-2012 (S0801032).
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contribuciones de los autores
NK llevó a cabo experimentos con animales y asistir a redactar el manuscrito. NN ayudó a los experimentos con animales y para redactar el manuscrito. TI ayudó a producir ratón. YK ayudó a mantener y producir ratón. YK participado en el diseño del estudio. OS participó en el diseño del estudio y la coordinación. SA diseñó el estudio, llevado a cabo la producción de ratón y describe manuscrito. Todos los autores leído y aprobado el manuscrito final.
